专为动物组织、血液、细胞、细菌、真菌等多种样本设计,轻松获取高产、高纯、完整性佳的基因组DNA
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|---|---|---|---|
| YC22016 | 50T | 300.00 | + |
YALEPIC® 通用型基因组DNA提取试剂盒(不含RNase A)适用于从新鲜/冷冻的动物组织、细胞、血液、细菌等多种样品中提取高质量DNA。本试剂盒采用优化的裂解液及独特的缓冲体系使DNA高效特异的结合到硅基质离心吸附柱上,纯化DNA片段分子量最大可至 50 kb,提取过程中无需使用苯酚/氯仿等有毒溶剂,无需乙醇沉淀。可最大限度地限度地去除RNA、杂蛋白、脂类及其他抑制性杂质,提取的DNA可用于酶切、PCR、Real-Time PCR、印迹杂交、文库构建等多种下游实验。
≤ 200 μl 无核新鲜或冻存的抗凝全血;5 ~ 20 μl 有核新鲜或冻存的抗凝全血;
≤ 5 × 106 个培养细胞;≤ 25 mg 动物组织;≤ 3 × 109 个细菌;≤ 5 × 107 个酵母菌。
| 序号 | 产品组分 | YC22016(50T) |
| ① | YGT Buffer | 15 ml |
| ② | YG Buffer | 15 ml |
| ③ | Wash Buffer GA | 13 ml |
| ④ | Wash Buffer GB | 16 ml |
| ⑤ | YGE Buffer | 15 ml |
| ⑥ | Proteinase K | 1.2 ml |
| ⑦ | Pure Columns YM with Collection tubes | 50 T |
常温运输;10 ~ 30℃ 室温保存。
Q1: 使用本试剂盒从不同样本中能提取到多少DNA?产量的大致范围是多少?
A: DNA产量因样本类型和用量而异。通常,从200 μl健康人全血中可提取3-6 μg DNA;从25 mg动物组织(如肝脏)中可提取10-30 μg DNA;从5 × 10⁶ 个培养细胞(如HEK293)中可提取15-40 μg DNA。建议在实验前查阅文献了解目标样本的DNA含量水平。
Q2: 除了说明书上推荐的样本类型,这个试剂盒还能用于其他样本吗?
A: 本试剂盒是一款“通用型”产品,其优化的裂解缓冲液体系适用于多种生物样本,核心是裂解细胞和去除蛋白。除了组织、血液、细胞,也能有效处理细菌(如大肠杆菌)、真菌(如酵母)等。对于植物组织、FFPE(福尔马林固定石蜡包埋)样本等特殊情况,不建议尝试。
Q3: 电泳检测时发现DNA条带拖尾或弥散,是降解了吗?如何避免?
A: DNA降解主要与样本本身和操作有关。首先,务必使用新鲜采集或妥善冻存的样本,避免反复冻融(这是核酸酶降解DNA的主要原因之一)。其次,裂解不充分也会影响DNA完整性,要确保组织块充分研磨,裂解液与样本混合均匀。提取完成后,建议将DNA产物分装保存于-20°C,避免反复冻融。
Q4: 提取的DNA产量很低,甚至检测不到,可能的原因是什么?
A: 产量低的原因通常有以下几种:
Q5: 提取的DNA纯度不高,测出的OD260/280比值偏低(<1.7)或偏高(>1.9),怎么解决?
A: 纯度是影响下游实验成功的关键,可从数值和现象判断问题所在:
Q6: 为什么提取的DNA在下游PCR或酶切实验中结果不好?
A: 主要是纯化的DNA中存在抑制剂残留,如乙醇或盐离子。解决方法包括:洗涤后在最大转速下空管离心2-3分钟彻底干燥离心柱;确保试剂瓶身标注需添加乙醇的溶液已正确添加。此外,如果DNA不纯,可以通过增加洗涤次数或在PCR体系中加入终浓度0.1μg/μl的BSA来缓解抑制作用。
Q7: 离心柱在操作中堵塞了,该怎么处理?
A: 离心柱堵塞通常由样本裂解不充分或投入量过多导致。可尝试以下方法:适当延长样本裂解时间并增加颠倒混匀次数;减少样本起始投入量,并确保裂解后溶液清亮无粘稠不溶物;离心前检查裂解液是否完全澄清。
Q8: 这款试剂盒的储存条件是什么?可以存放多久?
A: 本试剂盒非常稳定,可在室温(15-25℃) 条件下储存和运输,有效期为18个月。蛋白酶K(如果包装形式为干粉或溶液)建议按说明书分装冻存,避免反复冻融。无需特殊低温保存,为实验室的日常使用提供了极大便利。
原因1:样本采集与保存降解。
解决方案:
1)应尽可能选择新鲜的样本;
2)样本起始投入量不要超过所用方法的起始量标准;
3)样品保存时要尽可能的避免反复冻融;
原因2:样本前处理不当。
解决方案:
1)选择合适的处理方式并进行充分的样本前处理;
2)前处理结束后在样本解冻前添加裂解液;
原因3:样本裂解。
解决方案:
1)需对样本进行充分裂解;
2)正确添加所需试剂种类及使用量,样本量增加时裂解液也需成倍增加;
原因4:样品保存:
解决方案:对得到的DNA产物进行分装保存,避免反复冻融且保存时间不易太久。
原因1:样本采集与保存:
1)事先了解提取样本中DNA含量水平;
2)样本保存时要尽可能的避免反复冻融,保存时间不宜太久;
3)样本投入量适量,不宜过多或过少;
原因2:样本前处理和裂解:
1)细胞/组织样本:延长消化时间让样品充分消化,或玻璃匀浆器对样品进行匀浆;
2)细菌样本:
3)革兰氏阳性菌破壁不完全,可适量增加Lysozyme 的用量或延长酶消化时间;
4)菌液培养的时间,一般12-16h即可,时间过长会导致细菌死亡,菌体破裂,内容物析出DNA溶于水中,在收集菌体时随着上清被丢弃,故导致产量低;
5)Proteinase K 保存不当导致其活性降低或失活;
原因3:提取纯化:
1)有沉淀析出时,用移液枪吸打几次打散沉淀有利于提高产量;
2)GB buffer中无水乙醇添加量不准确,按照说明书正确添加无水乙醇;
3) 干燥吸附柱时间:开盖时间不宜超过5min,否则易造成DNA洗脱困难;
4) 洗脱液:请使用YGE buffer洗脱;若用ddH2O或其他洗脱液时,确认其PH值在7.0-8.5之间;
5)洗脱不充分:预热洗脱液并滴加在膜中央位置,尽可能的覆盖整个吸附膜,增加洗脱体积或者二次洗脱也可增加产量。
1.样本投入量不要太多;
2.样本应进行充分裂解:
3. 使用RNase对RNA进行处理,处理时间不宜太短,富含RNA 样品如肝脏、肾脏,培养细胞富含RNA,可延长RNase 消化时间至60 min;
4. 蛋白及盐离子残留:使用蛋白变性剂或蛋白酶K;GA Buffer /GB Buffer 漂洗充分;
5. 乙醇残留:吸附柱在洗脱前,未空管离心去除乙醇。请按照说明书空管离心后打开吸附柱管盖,室温放置2-5 min让乙醇彻底挥发。