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YALEPIC® 通用型基因组DNA提取试剂盒(不含RNase A)

高效通用型基因组DNA提取 | 20分钟快速提取 | 无需酚氯仿

专为动物组织、血液、细胞、细菌、真菌等多种样本设计,轻松获取高产、高纯、完整性佳的基因组DNA

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YC22016 50T 300.00+

产品简介

YALEPIC® 通用型基因组DNA提取试剂盒(不含RNase A)适用于从新鲜/冷冻的动物组织、细胞、血液、细菌等多种样品中提取高质量DNA。本试剂盒采用优化的裂解液及独特的缓冲体系使DNA高效特异的结合到硅基质离心吸附柱上,纯化DNA片段分子量最大可至 50 kb,提取过程中无需使用苯酚/氯仿等有毒溶剂,无需乙醇沉淀。可最大限度地限度地去除RNA、杂蛋白、脂类及其他抑制性杂质,提取的DNA可用于酶切、PCR、Real-Time PCR、印迹杂交、文库构建等多种下游实验。

产品优势

  1. 提取的基因组DNA产量高,完整性好,纯度高;
  2. 简单快速,最快15~20min内即可获得数个样品的基因组DNA;
  3. 完全去除污染物和抑制剂,可适用于各类下游实验。

适用范围

≤ 200 μl 无核新鲜或冻存的抗凝全血;5 ~ 20 μl 有核新鲜或冻存的抗凝全血;

≤ 5 × 106 个培养细胞;≤ 25 mg 动物组织;≤ 3 × 109 个细菌;≤ 5 × 107 个酵母菌。

实验案例

产品组分

序号产品组分YC22016(50T)
YGT Buffer15 ml
YG Buffer15 ml
Wash Buffer GA13 ml
Wash Buffer GB16 ml
YGE Buffer15 ml
Proteinase K1.2 ml
Pure Columns YM with Collection tubes50 T

保存及运输条件

常温运输;10 ~ 30℃ 室温保存。

发表论文

  • Epidemiological investigation and analysis of the infection of porcine circovirus in Xinjiang.| Virology Journal (2024) 21:230

FAQ

Q1: 使用本试剂盒从不同样本中能提取到多少DNA?产量的大致范围是多少?
A: DNA产量因样本类型和用量而异。通常,从200 μl健康人全血中可提取3-6 μg DNA;从25 mg动物组织(如肝脏)中可提取10-30 μg DNA;从5 × 10⁶ 个培养细胞(如HEK293)中可提取15-40 μg DNA。建议在实验前查阅文献了解目标样本的DNA含量水平。

Q2: 除了说明书上推荐的样本类型,这个试剂盒还能用于其他样本吗?
A: 本试剂盒是一款“通用型”产品,其优化的裂解缓冲液体系适用于多种生物样本,核心是裂解细胞和去除蛋白。除了组织、血液、细胞,也能有效处理细菌(如大肠杆菌)、真菌(如酵母)等。对于植物组织、FFPE(福尔马林固定石蜡包埋)样本等特殊情况,不建议尝试。

Q3: 电泳检测时发现DNA条带拖尾或弥散,是降解了吗?如何避免?
A: DNA降解主要与样本本身和操作有关。首先,务必使用新鲜采集或妥善冻存的样本,避免反复冻融(这是核酸酶降解DNA的主要原因之一)。其次,裂解不充分也会影响DNA完整性,要确保组织块充分研磨,裂解液与样本混合均匀。提取完成后,建议将DNA产物分装保存于-20°C,避免反复冻融。

Q4: 提取的DNA产量很低,甚至检测不到,可能的原因是什么?
A: 产量低的原因通常有以下几种:

  • 样本本身:样本DNA含量少(如白细胞数量低、细菌培养时间过长导致DNA释放并被丢弃),或保存不当导致降解。
  • 裂解不充分:组织块过大、蛋白酶K失活或孵育时间不足。建议延长56℃孵育时间(难裂解样本可过夜),并检查蛋白酶K的活性。
  • 试剂问题:关键试剂如漂洗液中忘记添加指定量无水乙醇。这是新手最常犯的错误之一,请务必按瓶身标签操作。
  • 洗脱不理想:DNA在离心柱膜上洗脱不充分。建议将洗脱液预热至60-70℃,滴加在膜中央,室温孵育1-5分钟后再离心,或进行二次洗脱以提高回收率。

Q5: 提取的DNA纯度不高,测出的OD260/280比值偏低(<1.7)或偏高(>1.9),怎么解决?
A: 纯度是影响下游实验成功的关键,可从数值和现象判断问题所在:

  • OD260/280比值偏低 (<1.7):表明存在蛋白质或苯酚残留。应确保裂解液中蛋白酶K足量并充分反应;洗涤后彻底干燥吸附柱以去除乙醇。
  • OD260/280比值偏高 (>1.9):表明有RNA残留。可在加入蛋白酶K前,加入4 μL RNase A (100 mg/mL),室温放置5分钟。
  • DNA难以溶解:可能是沉淀被过度干燥。自然干燥即可,时间不宜超过5分钟,避免使用真空干燥设备。

Q6: 为什么提取的DNA在下游PCR或酶切实验中结果不好?
A: 主要是纯化的DNA中存在抑制剂残留,如乙醇或盐离子。解决方法包括:洗涤后在最大转速下空管离心2-3分钟彻底干燥离心柱;确保试剂瓶身标注需添加乙醇的溶液已正确添加。此外,如果DNA不纯,可以通过增加洗涤次数或在PCR体系中加入终浓度0.1μg/μl的BSA来缓解抑制作用。

Q7: 离心柱在操作中堵塞了,该怎么处理?
A: 离心柱堵塞通常由样本裂解不充分或投入量过多导致。可尝试以下方法:适当延长样本裂解时间并增加颠倒混匀次数;减少样本起始投入量,并确保裂解后溶液清亮无粘稠不溶物;离心前检查裂解液是否完全澄清。

Q8: 这款试剂盒的储存条件是什么?可以存放多久?
A: 本试剂盒非常稳定,可在室温(15-25℃) 条件下储存和运输,有效期为18个月。蛋白酶K(如果包装形式为干粉或溶液)建议按说明书分装冻存,避免反复冻融。无需特殊低温保存,为实验室的日常使用提供了极大便利。

一、提取的DNA存在降解

原因1:样本采集与保存降解。

解决方案:

1)应尽可能选择新鲜的样本;

2)样本起始投入量不要超过所用方法的起始量标准;

3)样品保存时要尽可能的避免反复冻融;

原因2:样本前处理不当。

解决方案:

1)选择合适的处理方式并进行充分的样本前处理;

2)前处理结束后在样本解冻前添加裂解液;

原因3:样本裂解。

解决方案:

1)需对样本进行充分裂解;

2)正确添加所需试剂种类及使用量,样本量增加时裂解液也需成倍增加;

原因4:样品保存:

解决方案:对得到的DNA产物进行分装保存,避免反复冻融且保存时间不易太久。

二、提取的DNA产量低

原因1:样本采集与保存:

1)事先了解提取样本中DNA含量水平;

2)样本保存时要尽可能的避免反复冻融,保存时间不宜太久;

3)样本投入量适量,不宜过多或过少;

原因2:样本前处理和裂解:

1)细胞/组织样本:延长消化时间让样品充分消化,或玻璃匀浆器对样品进行匀浆;

2)细菌样本:

3)革兰氏阳性菌破壁不完全,可适量增加Lysozyme 的用量或延长酶消化时间;

4)菌液培养的时间,一般12-16h即可,时间过长会导致细菌死亡,菌体破裂,内容物析出DNA溶于水中,在收集菌体时随着上清被丢弃,故导致产量低;

5)Proteinase K 保存不当导致其活性降低或失活;

原因3:提取纯化:

1)有沉淀析出时,用移液枪吸打几次打散沉淀有利于提高产量;

2)GB buffer中无水乙醇添加量不准确,按照说明书正确添加无水乙醇;

3)  干燥吸附柱时间:开盖时间不宜超过5min,否则易造成DNA洗脱困难;

4) 洗脱液:请使用YGE buffer洗脱;若用ddH2O或其他洗脱液时,确认其PH值在7.0-8.5之间;

5)洗脱不充分:预热洗脱液并滴加在膜中央位置,尽可能的覆盖整个吸附膜,增加洗脱体积或者二次洗脱也可增加产量。

提取的DNA纯度低

1.样本投入量不要太多;

2.样本应进行充分裂解:

3. 使用RNase对RNA进行处理,处理时间不宜太短,富含RNA 样品如肝脏、肾脏,培养细胞富含RNA,可延长RNase 消化时间至60 min;

4. 蛋白及盐离子残留:使用蛋白变性剂或蛋白酶K;GA Buffer /GB Buffer 漂洗充分;

5. 乙醇残留:吸附柱在洗脱前,未空管离心去除乙醇。请按照说明书空管离心后打开吸附柱管盖,室温放置2-5 min让乙醇彻底挥发。

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