高性能质粒 DNA 转染试剂,无需更换培养基,转染效率高、细胞毒性低、实验重复性强
| 产品货号 | 产品规格 | 目录价 |
|---|---|---|
| YJ52001-01 | 1ml | 990.00 |
| YJ52001-02 | 5ml | 4700.00 |
YALEPIC®DNA转染试剂-LFD是一款专为质粒DNA高效递送而设计的高性能转染试剂,适用于多种易转染细胞及贴壁细胞系的质粒DNA转染与瞬时转染实验。本产品采用独特的阳离子脂质体配方技术,兼具与DNA高效复合及转染后快速释放的双重能力,确保在HeLa、293T、COS7、CHO、B16F10等常规细胞系中获得优异的转染效率,同时保持极低的细胞毒性。 核心优势在于:转染复合物形成后可直接加入完全培养基中,无需使用无血清培养基进行稀释或复溶,不受血清和抗生素成分的干扰,转染全过程无需更换培养基,极大简化实验操作流程。该试剂稳定性优异,2-8℃保存条件下可长期维持活性,批间重复性高,适合瞬时转染实验及稳转细胞株筛选。 对于分子量在2000-6000 bp范围的质粒DNA转染效果最佳,大质粒转染建议选用其他转染试剂产品。每个批次产品均经过严格质控,确保转染性能的稳定与可靠。
▸ **质粒DNA类型**:适用于2000-6000 bp范围内的质粒DNA转染(含瞬时转染和稳定转染),包括但不限于:
- 报告基因质粒(GFP、Luciferase等)
- 基因过表达质粒
- shRNA/CRISPR表达载体
- 基因敲除/敲入相关质粒
▸ **适用细胞类型**(已验证细胞系):
- HeLa(人宫颈癌细胞)
- 293T(人胚肾细胞)
- COS7(非洲绿猴肾细胞)
- CHO(中国仓鼠卵巢细胞)
- B16F10(小鼠黑色素瘤细胞)
- NIH-3T3、A549等常见贴壁细胞系
常温运输,2 ~ 8℃ 保存,不可冷冻。
A: 本产品专为贴壁细胞系的质粒DNA转染优化设计,特别适用于HeLa、293T、COS7、CHO、B16F10、NIH-3T3、A549等常规易转染贴壁细胞。对于悬浮细胞、原代细胞或极难转染细胞(如神经元、干细胞等),建议预实验评估效果,或选用雅礼生物大质粒专用转染试剂及其他专项产品。
A: 不需要。YALEPIC DNA转染试剂-LFD的核心优势之一就是不受血清和抗生素影响。转染复合物形成后可直接加入含血清和抗生素的完全培养基中,转染前后均无需更换培养基,这是与许多传统转染试剂(如Lipo2000系列)的重要区别,极大简化了操作流程。
A: 建议在1μL DNA : 1-5μL LFD的比例范围内进行梯度优化。由于不同细胞类型和质粒DNA的特性差异,最佳比例可能有所不同。推荐首次使用时设置3-4个梯度比例(如1:1、1:2、1:3、1:4),通过报告基因(如GFP)转染实验来确定针对您特定细胞-质粒体系的最佳比例。
A: 常见原因及解决方案包括:
转染试剂/DNA比例不合适 → 在1:1-1:5范围内优化比例
未用无血清培养基稀释 → LFD和DNA需分别在无血清培养基中稀释后再混合
细胞密度不合适 → 转染时细胞融合度保持在60%-70%效果最佳;密度过低会增加细胞毒性,过高会导致接触抑制
DNA质量差(降解或内毒素含量高) → 使用高纯度、无菌、无内毒素的质粒DNA
转染体系中存在抑制因素 → 避免硫酸葡聚糖、肝素等多聚阴离子聚合物
细胞状态差 → 使用传代适中的细胞,避免长时间培养或过度传代
A: 细胞死亡通常与以下因素相关:
转染试剂用量过高 → 减少LFD用量并优化DNA:LFD比例
细胞密度过低 → 转染前确保细胞融合度达到60%-70%,密度过低会使细胞对转染刺激更敏感
DNA纯度不足 → 内毒素会显著增加细胞毒性,务必使用去内毒素级别的质粒DNA
转染体系存在有毒物质 → 检查所用培养基、缓冲液等是否含有细胞毒性成分
YALEPIC产品本身具有极低的细胞毒性设计,在优化条件后通常可获得理想的细胞存活率。
A: 本产品常温运输,收货后请于2-8℃冷藏保存,严禁冷冻(-20℃及以下会破坏脂质体结构,导致活性丧失)。有效期自生产之日起18个月。使用后请及时盖紧瓶盖并放回2-8℃保存,避免反复开盖导致污染或活性下降。
A: 可以。YALEPIC DNA转染试剂支持多种质粒的共转染实验。建议将各质粒按目标比例混合后,以混合质粒的总DNA量计算转染试剂用量,按照优化后的DNA:LFD比例进行共转染。不同质粒之间的比例可能需要根据表达效率进行预实验优化。
A: YALEPIC DNA转染试剂-LFD的核心差异化优势包括:
操作更便捷:转染全过程无需换液,不受血清和抗生素影响
细胞毒性更低:温和配方显著降低对细胞的损伤
性价比更高:国产自主研发,价格优势明显
适用场景明确:针对2000-6000 bp质粒和常见贴壁细胞专门优化,针对性强、转染稳定
如需与进口品牌进行性能对比测试,雅礼生物可提供试用装供客户验证。
A: 瞬时转染实验中,建议在转染后24-48小时进行mRNA水平检测(qPCR),48-72小时进行蛋白水平检测(Western Blot、免疫荧光等)。最佳检测时间取决于具体细胞类型和目的基因的表达特性,建议根据预实验结果确定。
优化最佳比例:在1μlDNA :1~5μl LFD范围内尝试,优化DNA的使用量。
需分别在无血清培养基条件下按一定比例稀释后再进行混合孵育。
细胞密度过低导致细胞生长缓慢,对外来刺激变得较为敏感,使得转染毒性增高。细胞密度过高,会导致细胞发生接触抑制,加快细胞凋亡。细胞融合度达到60% – 70%时,转染可以取得较高的转染效率。可预实验优化细胞转染密度。
应使用高纯度、无菌、无内毒素的质粒DNA。
当转染体系中存在多聚阴离子聚合物时(例如:硫酸葡聚糖、肝素等),转染将无法正常进行,因此应避免上述物质存在于细胞转染体系中。
应尽量使用适度传代接种的细胞系,并尽量在平行实验时保持细胞传代次数的一致性,同时需避免细胞培养时间过长。