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雅礼生物FAQ中心汇集了用户在使用核酸提取、PCR纯化、磁珠法DNA/RNA提取等产品的常见问题。 您可以按产品类型浏览，或直接搜索关键词快速定位所需答案。
共 1195 条FAQ，分 60 页显示，当前第 25 页
产品FAQ
以下FAQ来源于各产品详情页，涵盖样本保存、核酸提取、PCR/qPCR、转染、血清、耗材等品类。点击产品名称可跳转至产品详情页。
YALEPIC® 尿液cfDNA样本保存管
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单支保存管建议尿液添加量是多少？样本采完需要摇晃混匀吗？
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按对应规格加满尿液即可，取样完成后颠倒摇晃 5~8 次，使尿液和管内保护液充分混合，保证核酸稳定效果。
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保存后的尿液样本可以兼容市面上哪些 DNA 提取试剂盒？
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适配主流国产 / 进口磁珠法、柱提法 cfDNA 提取试剂盒，优先推荐雅礼生物YALEPIC®磁珠法尿液游离DNA提取试剂盒，兼容各平台高通量测序前样本制备。
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尿液样本出现浑浊、少量沉淀会影响 cfDNA 保存效果吗？
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正常尿液轻微沉淀不影响游离核酸稳定性，只要在 7天窗口期内完成核酸提取即可正常上机检测。
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和进口 Streck、PAXgene 尿液 cfDNA 管对比，本品优势在哪里？
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国产现货交付周期短、采购成本更低，同等 4-37℃常温保存性能，支持按需定制，售后技术对接更便捷。
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产品是否无菌？可以用于人体临床体外诊断样本采集吗？
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管体内部无菌处理，符合临床样本采集规范，可用于临床体外检测、科研项目样本采集。
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高温夏季 37℃以上环境运输，会不会破坏尿液 cfDNA？
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短时环境超 37℃不影响 7 天基础保存效果。
YALEPIC® 快速PCR产物/琼脂糖凝胶DNA纯化回收试剂盒
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本试剂盒可以回收的DNA片段大小范围是多少？
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可稳定纯化回收100 bp ~ 20 kb区间的所有DNA片段，覆盖主流分子实验片段规格。
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完成一次DNA纯化回收需要多长时间？
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全程采用快速纯化流程，仅需15分钟即可完成结合、洗涤、洗脱全套操作，高效省时。
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试剂盒是否兼容TAE和TBE两种凝胶缓冲体系？
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完全兼容，适配所有常规浓度的TAE、TBE琼脂糖凝胶，无体系限制。
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单根吸附柱的最大DNA吸附量是多少？
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单吸附柱最高可吸附10 μg DNA，上样量充足，满足高浓度样本纯化需求。
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纯化后的DNA可以直接用于测序实验吗？
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可以，纯化后DNA纯度高、无杂质、完整性好，可直接用于测序、连接转化、体外转录等各类下游实验。
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试剂盒的DNA最高回收率可以达到多少？
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在标准实验条件下，DNA回收率最高可达80%，远高于普通纯化试剂盒，实验容错率更高。
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该试剂盒的运输和保存条件是什么？
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支持常温运输，无需冷链；日常可在10-30℃室温环境下密封保存，储存便捷。
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除了凝胶回收，还能用于哪些样本纯化？
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不仅可用于琼脂糖凝胶DNA回收，还可纯化PCR产物、酶切、连接、探针标记等各类酶反应体系的DNA粗品。
YALEPIC® 快速小鼠直扩PCR鉴定试剂盒
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什么是”小鼠直扩PCR”？和先提取基因组再PCR有什么区别？
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常规流程需先对鼠尾等组织进行过夜蛋白酶 K 消化，再经酚氯仿抽提或柱式纯化获得基因组 DNA，前处理往往要数小时甚至隔夜。小鼠直扩 PCR 跳过 DNA 纯化环节——组织经裂解液短时间裂解后，释放出的基因组 DNA 直接用作 PCR 模板。本试剂盒仅需 95℃ 孵育 5 min 即可完成裂解，把前处理压缩到分钟级。对于基因型鉴定、转基因筛查这类样本量极大的常规检测，直扩方案能显著缩短周期、降低耗材成本，同时减少多次移液带来的交叉污染风险。
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可以用哪些小鼠组织？每次需要取多少？
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本试剂盒适用于鼠尾、鼠耳、鼠趾、肝脏等多种小鼠组织。每次取样量推荐 1~2 mm²（约米粒大小），这一用量已能释放足够的基因组 DNA 用于常规基因型鉴定 PCR。取样过多并不会提升成功率，反而可能带入更多抑制物；取样器械应保持洁净，避免交叉污染。
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裂解的具体条件是什么？为什么是 95℃？
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将 1~2 mm² 组织加入裂解液后，于 95℃ 孵育 5 min 即可完成裂解并释放基因组 DNA。高温加热一方面破坏组织结构与细胞膜，使 DNA 释放到溶液中；另一方面高温也能使蛋白变性失活，避免残留核酸酶对模板的降解。裂解完成后短暂离心，取上清即可作为 PCR 模板使用。
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本试剂盒能扩多长的片段？可以做多重 PCR 吗？
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本试剂盒可适用于 15 kb 以内靶标片段的扩增，并支持多重 PCR 反应，满足多基因位点同时鉴定的需求，常用于在一管反应中同步检测多个转基因元件或内参基因。需注意的是，多重体系中各引物对之间存在竞争，重数越高对引物设计要求越严格，建议先分别验证单重扩增，再逐步提高重数，并按需调整各对引物的终浓度配比。
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裂解产物加多少到 PCR 体系合适？加多了会怎样？
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裂解产物用量是直扩成败的关键变量，具体推荐体积请参照随货说明书。一般原则：用量过少则模板不足，目标条带偏弱甚至无扩增；用量过多则会带入过量裂解液成分，抑制聚合酶活性，同样导致扩增失败。若反复出现无扩增或条带很弱，可将裂解产物适当稀释后再加入 PCR 体系，通常能有效缓解抑制。
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为什么没有扩增出条带？怎么排查？
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常见原因与处理措施：
可能原因 解决方案 取样量过少或组织未完全浸没 调整至 1~2 mm²，确保组织充分接触裂解液 裂解不充分 确认裂解时间与温度，必要时延长裂解时间 裂解产物加入量过高（抑制） 减少加入量，或将裂解产物稀释后再加 退火温度过高 逐步降低退火温度（每次约 2~3℃）优化 循环数不足 适当增加 PCR 循环数 引物特异性差或设计不佳 重新设计引物，BLAST 核对特异性 MasterMix 反复冻融致酶活下降 按次分装保存，避免反复冻融 模板降解 使用新鲜组织，避免样本反复冻融 建议每次实验均设置阳性对照与阴性对照——阳性对照用于验证体系与引物正常，阴性对照（无模板）用于排除外源污染。
