YALEPIC® 磁珠法粪便/土壤 DNA/RNA 共提取试剂盒
磁珠法一次流程同时提取粪便/土壤DNA与总RNA，免酚氯仿，适配96孔自动化。
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产品简介
YALEPIC® 磁珠法粪便/土壤 DNA/RNA 共提取试剂盒（货号 YG28011）面向粪便、土壤、淤泥、活性污泥等强抑制环境样本。在同一份样本、同一套试剂体系内，一次实验流程即可同时获得基因组 DNA 与总 RNA，不必为两类核酸分别取样、分别做前处理，从而减少样本消耗、保持 DNA 与 RNA 的样本同源性。
试剂采用优化的磁珠分离技术，配合针对高抑制样本设计的缓冲体系，可有效去除腐殖酸、黏多糖、胆红素、蛋白质等 PCR 抑制物，产物纯净度稳定，可直接投入 PCR、qPCR、RT-qPCR、二代测序及宏基因组 / 宏转录组分析。磁珠法体系同时适配 96 孔板自动化核酸提取平台，便于批量环境样本与队列样本的标准化处理。
DNA 与 RNA 产物分别适用于微生物群落结构解析与群落功能活性解析，适合希望在同一取样点上同时拿到「谁在那里」和「谁在工作」两组数据的课题设计。
产品优势
- 一份样本，两套数据：DNA 与总 RNA 来自同一份裂解样本，宏基因组与宏转录组结果可直接对应同一取样点，减少分批取样引入的样本间差异。
- 节省珍贵样本：对深层土壤、活性污泥、少量冻存粪便等难以重复获取的样本，无需为 DNA 和 RNA 各消耗一份。
- 强抑制样本专用缓冲体系：针对腐殖酸、黏多糖、胆红素、蛋白质等抑制物优化，减轻抑制物对下游酶反应的干扰。
- 适配自动化平台：磁珠法流程可直接上 96 孔板自动化核酸提取仪，适合高通量、多批次样本的标准化提取。
适用范围
样本类型
- 土壤类：农田土、山林土、花坛土、花盆土、红黑土、淤泥、粉尘、活性污泥、沉积物
- 粪便类：固态粪便、液态粪便，以及小鼠、大鼠、猪、鸡、牛等动物粪便
- 其他环境样本：堆肥、污水、肠道内容物
下游应用
- DNA 产物：PCR、qPCR、16S rRNA 扩增子测序、宏基因组测序、微生物群落结构分析
- RNA 产物：RT-PCR、RT-qPCR、cDNA 合成、宏转录组（RNA-seq）、群落功能活性分析
- 典型场景：土壤微生物组、肠道菌群、环境监测、堆肥与污水处理工艺研究、动物营养与微生态研究
相关方案
粪便/土壤 DNA 提取如何去除腐殖酸与多酚 ｜ 粪便/土壤 RNA 提取如何去除腐殖酸与多糖 ｜ 粪便 DNA 样本保存管 ｜ 粪便 RNA 样本保存管
实验案例
使用YG28011产品，分别从两份不同的土壤样本（200mg）以及粪便样本（100mg）中提取DNA和RNA，取6 μl核酸产物进行琼脂糖凝胶电泳结果显示，YG28011试剂盒提取不同粪便土壤样本的DNA和RNA均具有较高的产率及完整性。
保存及运输条件
- RSL Buffer：常温运输，2~8℃ 保存。
- 其他组分：10~30℃ 常温运输与保存。
- 有效期：按上述条件保存，有效期 18 个月（以产品标签标注的批号效期为准）。
FAQ
Q1：DNA 和 RNA 是一次提取完成，还是要分两次做？
A1：本试剂盒针对同一份样本设计：样本裂解后，在同一套磁珠法体系内完成核酸捕获与纯化，最终分别得到 DNA 与总 RNA 两组产物，不需要为 DNA 和 RNA 各取一份样本、各做一次前处理。具体的分组方式、洗脱顺序与操作参数以随货说明书为准。
Q2：土壤、粪便里的腐殖酸和黏多糖怎么去掉？
A2：样本裂解后，采用优化的磁珠分离技术与针对高抑制样本配制的缓冲体系，在结合与洗涤环节将腐殖酸、黏多糖、胆红素、蛋白质等 PCR 抑制物与核酸分离。若下游 qPCR 仍出现扩增抑制，可先减少起始样本量、增加洗涤次数，或对产物做适当稀释后再上机。
Q3：共提取时，DNA 会不会影响 RNA 的 RT-qPCR 结果？
A3：裂解后 DNA 与 RNA 共同释放，RNA 组分中可能残留基因组 DNA，需通过自备的DNase I消化去除。土壤与粪便样本 gDNA 背景较高，这一步不建议省略；下游为 RT-qPCR 时，建议同时设置无逆转录对照（-RT）确认去除效果。
Q4：提取的 RNA 产量偏低，可能是什么原因？
A4：常见原因与处理方向：
- 起始样本量不足：一般土壤建议起始量 0.2~0.3g；含水量较高的底泥因实际土壤含量偏低，可适当增加起始量。
- 裂解不充分：增加物理研磨时间或次数，使样本充分破碎。
- RNA 降解：采集后尽快液氮冷冻并储存于 -70℃，或使用专用的土壤 RNA 保护溶液。
Q5：粪便样本采集后怎么保存才不降解？
A5：建议采集后尽快处理。可分装后于 -80℃ 冷冻，避免大块样本反复冻融；从冰箱取出的样本在尚未融化时即可加入裂解缓冲液开始研磨；新鲜采集未经冷冻的样本应立即加入裂解缓冲液处理。若无法即时处理，可配套使用粪便 RNA 样本保存管进行常温运输与暂存。
Q6：RNA 纯度差（A260/A280 偏低）怎么解决？
A6：常见原因与处理方向：
- 蛋白质污染：增加结合缓冲液再一次洗涤。
- 盐类污染：增加洗涤缓冲液洗涤次数；必要时可加入 2.5 倍体积乙醇与 0.1 M NaCl（终浓度），-20℃ 孵育 30 min 后离心重悬。
- 样本过量：减少起始样本量。
Q7：能上自动化核酸提取平台吗？
A7：可以。试剂盒采用磁珠法设计，核酸结合于磁珠表面，支持 96 孔板自动化核酸提取平台操作,适合高通量样本处理。上机前建议先按仪器说明完成程序适配与验证。
Q8：DNA 和 RNA 产物分别能用于哪些下游实验？
A8：DNA 产物可用于 PCR、qPCR、16S rRNA 扩增子测序、宏基因组测序与微生物群落结构分析；RNA 产物可用于 RT-PCR、RT-qPCR、cDNA 合成与宏转录组（RNA-seq）分析。两类产物来自同一份样本，便于在同一取样点上联合解析群落组成与功能活性。
