组织 DNA/RNA 保存液与保存管怎么选

RNA 等不起：组织样本该怎么存

货号 YS21071 保存液（100 mL / 500 mL）与 YS21072 预装保存管（5 ml/支）｜2026 版

组织RNA保存
常温免液氮
一管双存

发布日期：2026-10-14　·　最近更新：2026-10-14　·　撰稿：雅礼生物技术部　·　复核：雅礼生物市场部

60 秒速览：这套方案解决什么问题

1. 浸没即可保存：新鲜组织无需液氮速冻、无需当场提取，室温可稳定 7 天。

2. 时间梯度完整：4℃ 可保存 4 周，转入 -20℃ 或 -80℃ 可长期保存。

3. 一管双存：以保护组织 RNA 完整性为核心，同时稳定基因组 DNA。

4. 无交联固定剂：无毒性水溶性配方，不含甲醛，不干扰下游提取与扩增。

5. 下游兼容广：适配主流提取试剂盒与自动化平台，可用于 RT-qPCR、转录组测序、PCR、qPCR。

6. 适用样本广：动物新鲜组织、幼嫩植物组织、贴壁与悬浮细胞，以及病毒、细菌、昆虫等科研样本。

7. 试剂货架期 2 年：原液 4~37℃ 密封避光保存，常温运输；这是未开封试剂的货架期，与样本保存窗口是两个概念。

8. 两种货号：YS21071-100（100 mL/瓶）与 YS21071（500 mL/瓶）自备容器；YS21072 为 5 ml/支、100 支/盒的预装保存管。

结论：组织离体后，DNA 靠双链结构与脱氧核糖可等待数小时，RNA 却因单链构型、核糖 2′-OH 与即刻释放的内源 RNase 在数十分钟内开始降解且不可逆；保存液的首要任务是把 RNA 状态先固定住。

同时发生的过程	具体机制	对 RNA 的后果
缺血与酶释	血流中断后细胞缺氧，溶酶体破裂并释放内源 RNase	RNase 立即切割自家 RNA，降解起点前移到取样瞬间
自溶（autolysis）	水解酶逐步消化组织自身结构，细胞界限崩解	核酸暴露于更高浓度的酶环境，降解加速
表达谱漂移	缺氧本身会诱导一批应激相关基因的表达变化	即使 RNA 链未断裂，表达谱也可能已偏离体内状态

对比维度	基因组 DNA	RNA
结构形态	双链，碱基包在螺旋内侧，化学性质相对惰性	多为单链，碱基暴露，更易受攻击
糖环化学	脱氧核糖没有 2′-OH，不易被碱水解	核糖带 2′-OH，可发起分子内亲核攻击使磷酸二酯键断裂
键稳定性	磷酸二酯键相对稳定	公开研究提示其磷酸二酯键稳定性比 DNA 约低 200 倍（Li & Breaker, 2013）
主要威胁	DNase 多依赖金属辅因子，较易被螯合剂抑制	RNase 耐热、耐酸碱、不需要金属辅因子，常规手段难以清除
降解后能否补救	片段化后仍常用于扩增与基因分型	降解不可逆，RIN 掉档后无法通过实验手段恢复

四个反复出现的痛点

RNase 无处不在：台面、指尖皮肤、空气浮尘、试剂容器都可能携带 RNase，且这类酶耐热、耐酸碱，常规高温高压难以充分灭活。

冷链依赖成本高：液氮、干冰与超低温冰箱缺一不可，成本随样本量累加；野外采样与跨区域邮寄往往搭不起这条链路。

传统固定剂有毒：甲醛、二甲苯等交联固定剂存在操作安全与职业健康风险，交联还会给下游提取与扩增带来额外障碍。

冻融损伤不可逆：反复冻融的冰晶剪切会使 RNA 断裂、完整性数值波动加大；对长期归档的样本库而言，每次取用都是一次风险敞口。

结论：液氮速冻、离液盐裂解液与保存液浸没三条路径各有适用边界——前两条分别受制于设备条件与样本不可留存，第三条受制于扩散渗透速度，没有一种是全场景通用的。

路径	优势	短板
液氮速冻	公认的金标准，瞬间冻结、酶活几乎立即停止	需要液氮与规范操作；组织块偏大时冻结不均匀，未冻透部分仍会形成冰晶；野外与邮寄场景很难实现
离液盐裂解液	变性能力强，灭酶能力突出，可直接衔接提取流程	只能当场使用，裂解后样本无法长期留存，也做不了形态学观察
保存液浸没 （本文所述方案）	无液氮、无超低温设备需求，常温运输，样本可留存后再提取	依赖扩散渗透——保存液从表面渗到内部需要时间，组织块越大，中心区域的 RNA 越晚被保护到

结论：RNase 是即刻释放的，保存液却是缓慢扩散到达的，两者之间的时间差就是组织内部 RNA 的降解窗口；扩散时间与距离平方成正比，因此组织块大小直接决定 RIN 分层。

分组条件	RIN 表现	解读
≤ 30 mg	RIN ≥ 8	各类处理条件下都能维持高质量 RNA，最稳定的区间
≤ 100 mg	RIN ≥ 7	冰上或 -20℃ 过夜解冻，完整性可维持，可用区间但已有波动
250 ~ 300 mg（冰上解冻）	RIN 约 5.25	完整性明显下滑，大块样本是主要风险来源
250 ~ 300 mg（-20℃ 解冻）	RIN 约 7.13	同样大小换一种解冻方式，结果差别显著
处理延迟 120 分钟	RIN 约 9.38	延迟有影响，但在小块样本上代价可控
处理延迟 7 天	RIN 约 8.45	从 9.38 降到 8.45，全组仍保持在 RIN ≥ 8 的水平

低温下的”冰泥”屏障

研究还记录了一个很说明问题的现象：保存液在低温下会形成半冻结的冰泥状态，产生物理屏障，阻碍它充分渗透进组织间隙。结果是表面组织测出的完整性很好，但研究本身也承认反复取样时无法区分外部与内部切片——这说明内部状态存在不确定性。因此转入低温前，应先在常温条件下完成充分浸没。

结论：YS21071 是瓶装保存液，自备容器按需取用，适合样本量与容器规格都不固定的取材现场；YS21072 是预装无菌保存管，5 ml/支、100 支/盒，开箱即用，两者对样本的保存窗口一致。

项目	YS21071 保存液	YS21072 预装保存管
产品名称	YALEPIC 组织样本 DNA/RNA 保存液	YALEPIC 组织样本 DNA/RNA 保存管
货号	YS21071-100 / YS21071	YS21072
产品规格	100 mL/瓶 与 500 mL/瓶	5 ml/支，100 支/盒
未开封试剂货架期	4~37℃ 密封避光，2 年	4~37℃ 保存，2 年
样本保存窗口	室温 7 天；4℃ 4 周；-20℃ / -80℃ 长期	室温 20~25℃ 7 天；4℃ 4 周；-20℃ / -80℃ 长期
运输条件	全程常温，无需冷链或干冰	常温运输，4~37℃
使用方式	自备容器，组织完全浸没，液量至少 5~10 倍	一体式预装无菌，开箱投入即用
保护对象	优先保护组织 RNA 完整性，同步稳定基因组 DNA	DNA 与 RNA 一管双存，支持共提取
配方特点	水溶性无毒性配方，不含甲醛等交联固定剂	不含甲醛、二甲苯、酚类，出厂无 DNase / RNase 污染
兼容提取方案	主流核酸提取试剂盒与自动化提取平台	柱式法 / 磁珠法，手动及高通量自动化
下游应用	RT-qPCR、转录组测序、PCR、qPCR	qPCR / RT-qPCR / NGS 测序 / 基因芯片 / 基因分型

结论：YS21072 预装保存管以一体式无菌设计实现 DNA 与 RNA 同步保护，全程常温运输、开箱即用、无毒配方、耐受反复冻融，并兼容柱式法与磁珠法及主流下游检测平台。

六个核心优势

1　DNA、RNA 同步保护，一管双存：单支保存管可同时稳定锁住组织内的 RNA 与基因组 DNA，无需分开分装，特别适合肿瘤与正常配对组织的核酸共提取。

2　全程常温运输，无需液氮与冰袋：4~37℃ 区间均可稳定保护核酸，野外采样与多中心转运无需干冰、液氮或冰盒，物流成本与温控风险同步下降。

3　预装无菌保存液，开箱即用：一体化成品无菌管，出厂预装足量保护液，无需自行配制与分装，从取样到核酸保护在数秒内完成。

4　无毒安全配方，无甲醛与二甲苯：水溶性低毒配方，不含甲醛、二甲苯、酚类等交联固定试剂，可在常规实验条件下使用。

5　耐受反复冻融，适配样本库长期归档：配方可耐受样本多次反复冻融，适配临床与动物模型样本库的大批量长期归档；仍应尽量减少冻融次数。

6　兼容全品类样本与全下游检测平台：覆盖动物组织、植物组织、细胞、微生物、昆虫等类型，产物可用于 NGS 测序、荧光定量 PCR、基因芯片与基因分型。

五步流程：从取样到下游实验

第 1 步　组织取样：新鲜样本取材后尽快切成小块或薄片，控制在 30 mg 以内。

第 2 步　投入保存管：开箱即用，确认组织块被保存液完全浸没后旋紧管盖。

第 3 步　常温运输：4~37℃ 条件下运输与暂存，无需液氮、干冰或冰盒，室温条件下 7 天内送达。

第 4 步　核酸提取：按柱式法或磁珠法提取，DNA 与 RNA 可分别或共提取。

第 5 步　下游实验：产物直接用于 qPCR、RT-qPCR、NGS 测序、基因芯片与基因分型等应用。

结论：切小块、液量给足、尽快浸没三条铁律决定了保存效果的上限；整块浸泡、直接冷藏、液量抠紧与反复冻融是四类最常见的失败来源，其中后两类在 RNA 项目上代价最大。

三条铁律

铁律 1　切小块：切成薄片或小块后再浸没。30 mg 以内表现最稳定，100 mg 以内属于可用区间；整块或数百毫克的大块是失败高发区。若样本无法分割，应把完整性预期下调并与下游要求对齐。

铁律 2　液量给足：保存液体积至少为样本体积的 5~10 倍，确保完全浸没；液量不足时局部 RNase 抑制不到位。预装保存管按管内装量匹配样本大小，不要超量投放。

铁律 3　尽快浸没：离体到入液的时间越短越好。RNA 降解不可逆，延迟确有影响，但只要块足够小，抗风险能力会明显增强——文献中延迟 7 天仍能保持 RIN ≥ 8，前提是样本被切到 30 mg 以内。

四个最常见的误区

误区 1　整块丢进去，觉得泡着就安全：保存液靠扩散渗透，块越大中心越晚被保护，应先切成小块再完全浸没。

误区 2　以为直接扔冰箱就等于保存了：低温只减慢反应，不能立即终止降解，降温过程中 RNase 仍在工作，慢速冷冻还会形成冰晶。先浸没、再低温，顺序不能反。

误区 3　液量抠得太紧：液量不足时局部抑制不充分，大块组织更易出问题，应按 5~10 倍给足。

误区 4　同一份样本反复取用、反复冻融：冻融对 RNA 的影响明显大于 DNA，多次循环会增加完整性数值波动。采集时分装成小份，是最低成本的保险。

结论：动物新鲜组织、幼嫩植物组织、培养细胞与微生物样本均可浸没保存，野外采样与多中心协作受益明显；病理形态学检查、已固定交联样本、木质化成熟植物与单细胞转录组需先评估再定方案。

适用与需谨慎的边界

适用：动物新鲜组织（切块后浸没，RNA 研究受益明显）；幼嫩植物组织；培养贴壁与悬浮细胞（白细胞、分选细胞）；病毒、细菌、昆虫等科研样本；野外采样、跨区域邮寄、无液氮与超低温设备的场景。

需谨慎或不适用：需保留组织形态学结构的病理学检查样本（保存液会改变形态学表现）；已固定交联的样本（如甲醛固定石蜡包埋）；木质化或高度纤维化的成熟植物组织；对完整性要求极高的单细胞转录组场景，建议先做小规模验证。

四类高匹配样本与场景

临床科研样本：手术肿瘤配对组织、人体正常组织、多中心批量采集样本、样本库保藏。

动物与植物实验样本：小鼠与大鼠模型组织、野外植物叶片与根茎、昆虫组织。

细胞与微生物：贴壁培养细胞、白细胞与流式分选悬浮细胞、病毒与细菌菌株。

特殊采样场景：空间跨度大的野外采样、无超低温设备的批量取样、常温长途运输。

六个最常受益的下游场景

转录组测序：在块小、液足的前提下，为 RNA 建库提供稳定的完整性起点。

基因表达分析：与 RT-qPCR 流程衔接，表达谱少受采样时间影响。

野外与偏远地区采样：无需液氮，常温邮寄，采样不再受设备限制。

多中心样本协作：统一浸没流程，跨机构样本条件更易对齐。

动物实验取材：一批实验多点取材，先保存再统一提取。

样本库前期处理：为后续长期冻存做好 RNA 状态固定。

七个维度的差异

设备依赖：液氮速冻法需液氮罐或超低温冰箱；保存液方案无需冷链设备，室内常温即可完成浸没。

运输成本：液氮速冻法依赖干冰或液氮运输，成本随样本量与距离累加；保存液方案常温运输，成本与温控风险同步下降。

操作复杂度：液氮速冻法需现场速冻、转移、存储多步操作；保存液方案投入即用，一步完成浸没。

DNA 与 RNA 同步保存：液氮速冻法仅冻结、不主动保护核酸；保存液方案一管双存，同步抑制核酸酶并稳定两类分子。

反复冻融耐受：液氮速冻法的冻融会造成 RNA 断裂与完整性波动；保存液配方可耐受多次冻融，仍建议采集时分装小份。

安全性：液氮速冻法存在液氮冻伤与密闭空间风险；保存液为水溶性低毒配方，常规实验条件即可操作。

野外采样适用性：液氮速冻法受设备与补给硬约束；保存液方案适配无低温设备的野外与长途采样。

结论：下面十条覆盖切块尺寸、液量比例、温度窗口、试剂货架期与适用边界；若仍无法判断，可回到样本类型与下游实验要求这两条主线做取舍。

Q1：组织离体后直接放冰箱或冻起来，RNA 能保住吗？

低温只能减缓反应速率，不能立即终止降解。组织离体后内源 RNase 已被释放，降温过程中仍会持续作用；慢速冷冻还会形成冰晶。更稳妥的做法是先把组织切小块、浸没于保存液把酶按住，再按需转入低温保存。

Q2：为什么说在组织样本里，RNA 比 DNA 更需要保存液？

细胞内 mRNA 的半衰期通常以分钟到小时计，基因组 DNA 结构则相对稳定；组织缺血后溶酶体破裂释放内源 RNase，这类酶耐热、耐酸碱、不需要金属辅因子，极难通过常规手段去除。RNA 降解不可逆，DNA 的损失往往还可部分补救，因此保存液的核心任务是抢在酶解前把 RNA 状态固定下来。

Q3：组织 RNA 保存需要搭配液氮使用吗？

不需要。新鲜样本浸没于保存液后即可常温放置与常温运输，无需液氮速冻，也无需当场提取核酸；没有液氮罐或超低温冰箱的实验室同样可以使用。若已有液氮条件且样本量很小，液氮速冻仍是可行的并行方案。

Q4：用保存液处理后，组织样本能保存多久？未开封试剂的货架期怎么算？

两者要分开看。样本侧：室温条件下可稳定保存 7 天，4℃ 条件下可保存 4 周，转入 -20℃ 或 -80℃ 后可用于长期保存。试剂侧：未开封保存液在 4~37℃ 密封避光条件下货架期为 2 年。不要把试剂货架期理解成样本保存期。

Q5：组织块应该切多大？为什么不能整块泡？

保存液依靠扩散从表面向内部渗透，渗透时间大致与距离的平方成正比——厚度翻倍，所需时间约变为四倍。公开研究显示，30 mg 以内的组织在多种处理条件下都能维持 RIN 不低于 8，而 250~300 mg 的大块样本在冰上解冻时 RIN 可低至约 5。

Q6：保存液与样本的体积比例怎么把握？预装管需要补液吗？

建议保存液体积至少为样本体积的 5~10 倍，确保组织被完全浸没且液体充足。液量不足会导致局部 RNase 抑制不充分，在大块或高核酸含量的组织上更容易降解。预装保存管出厂已配好液量，按管内装量匹配样本大小即可，不要超量投放组织。

Q7：反复冻融对组织 RNA 完整性的影响大吗？

对 RNA 的影响明显大于 DNA。公开研究提示，多次冻融循环会增加 RNA 完整性数值的波动，较大的组织块尤其明显。稳妥做法是采集时即分装成小份；预装保存管配方虽可耐受多次冻融，仍应尽量减少冻融次数。

Q8：保存后的样本还能测 RIN 吗？会影响转录组测序吗？

可以正常检测。按规范操作（切小块、液量充足、及时浸没）保存的样本，可取出提取 RNA 后做完整性评估与建库。配方不含交联固定剂与干扰组分，兼容主流核酸提取试剂盒与自动化提取平台；完整性结果受物种、组织类型与操作条件影响，建议首次使用前做小规模验证。

Q9：同一份样本可以同时提取 DNA 和 RNA 吗？支持哪些提取方式与下游平台？

可以。该配方同步稳定组织细胞内的 RNA 与 DNA，无需分别使用两种保存试剂，一份浸没保存的样本即可同时满足转录组与基因组两类研究需求。提取兼容柱式法与磁珠法，产物可用于 qPCR、RT-qPCR、NGS 测序、基因芯片与基因分型。

Q10：保存液含甲醛或二甲苯吗？哪些样本或场景不适用，选型该从哪里入手？

保存液为水溶性低毒配方，不含甲醛、二甲苯、酚类等交联固定剂。需谨慎或不适用的情形包括：需保留组织形态学结构的病理学检查样本；已固定交联处理的样本（如甲醛固定石蜡包埋）；木质化或高度纤维化的成熟植物组织；对完整性要求极高的单细胞转录组场景。选型建议先按样本类型与保存窗口两条主线比对，可参考样本保存液选型总览逐项核对。

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使用边界：本产品仅供科研使用，不用于疾病的诊断或治疗。涉及人体与动物样本采集须遵守相应伦理规范；操作时请遵循实验室常规防护要求，按规范处理生物样本。