YALEPIC^® 100bp Plus DNA 分子量标准

YALEPIC^® 100bp Plus DNA Marker是雅礼生物推出的一款即用型双链DNA分子量标准品，由10条线状双链DNA条带组成，片段范围覆盖100bp至2000bp（100bp、200bp、300bp、400bp、500bp、600bp、800bp、1000bp、1500bp、2000bp），专为琼脂糖凝胶电泳DNA片段大小判断设计。本产品采用酶切质粒DNA工艺制备，分子量准确，条带清晰，背景干净。产品为即用型，已预混1×Loading Buffer，无需额外添加上样缓冲液，直接取5μl即可上样电泳，操作便捷。

100 bp，200 bp，300 bp，400 bp，500 bp，600 bp，800 bp，1000 bp，1500 bp，2000 bp。

• 琼脂糖凝胶电泳中DNA片段大小鉴定（主要用途）
• PCR产物分子量比对分析
• 限制性酶切片段尺寸检测
• DNA半定量分析
• 不适用于聚丙烯酰胺凝胶电泳

2 ~ 8℃ 保存两年，-20℃ 保存三年。

Q1：100bp Plus DNA Marker与普通100bp DNA Marker有什么区别？

A： 雅礼生物YALEPIC 100bp Plus DNA Marker的条带覆盖范围更广（100-2000bp共10条带），优于普通100bp Marker的100-1000bp覆盖范围。其中500bp条带设计为增强亮带（100ng/5μl），便于实验中的快速定位和半定量分析。此外，本产品已预混1×Loading Buffer，即开即用，操作更为便捷。

Q2：100bp DNA Marker电泳条带拖尾或模糊怎么办？

A： 电泳条带出现拖尾或模糊，通常由以下原因引起，可按对应方案处理：

电泳缓冲液多次使用后，离子强度降低、pH值上升，会导致缓冲能力下降，从而出现条带模糊或不规则迁移现象，建议每次实验都使用新鲜缓冲液–。

Q3：YALEPIC 100bp Plus DNA Marker的条带亮度不均匀正常吗？

A： 正常。本产品特别设计了500bp增强亮带（100ng/5μl），该条带浓度是其他普通条带（约50-40ng/5μl）的2倍左右，因此电泳后500bp条带明显更亮。这一设计目的是为实验人员提供清晰的参考条带，便于快速定位和准确定量目的DNA片段。其余条带亮度略弱但清晰可辨，不影响使用。这是同类产品中广泛采用的设计方案。

Q4：100bp Plus DNA Marker可以在PAGE胶上使用吗？

A： 不建议。本产品专为琼脂糖凝胶电泳设计优化，不建议用于聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）。如需PAGE分析，建议选用适配的非变性PAGE专用DNA Marker。此外，本产品也不能用于变性胶中的RNA分析，因为双链DNA在变性条件下会解开为单链，无法准确指示RNA分子量。

Q5：如何正确保存DNA Marker以保证长期稳定使用？

A： 雅礼生物YALEPIC 100bp Plus DNA Marker支持两种保存方式：2~8℃冷藏可保存2年，-20℃冷冻可保存3年。实际使用建议如下：

• 短期频繁使用（如每周使用）：置于2~8℃冷藏，取用方便，无需反复冻融
• 长期储备（如备用库存）：置于-20℃冷冻保存，可最大限度延长有效期
• 使用前务必充分溶解并混匀，避免浓度不均
• 避免反复冻融，分装保存可进一步保证稳定性

Q6：本产品是否兼容荧光染料（如GelRed、SYBR Green）？

A： 兼容。雅礼生物YALEPIC 100bp Plus DNA Marker适用于常用的核酸荧光染料，包括GelRed、SYBR Green、GoldView等。电泳完成后可在凝胶成像系统中使用对应的激发光源进行观察。建议在加样前将DNA Marker与染料混合，或电泳后对凝胶进行染色，两种方式均可获得清晰的条带图像。

Q7：YALEPIC 100bp Plus DNA Marker使用哪种Loading Buffer？

A： 本产品为即用型，已预混1×Loading Buffer，用户无需额外添加。该Loading Buffer配方经过优化，在电泳过程中可保证DNA样品顺利沉入加样孔，同时在电泳过程中形成清晰的指示前沿，便于监控电泳进程。

Q8：使用100bp DNA Marker时，电泳条带分离效果不好是什么原因？

A： 条带分离效果不理想，常见原因及解决方法：

1. 琼脂糖浓度不合适：100~2000bp片段建议使用1%~1.5%琼脂糖凝胶，浓度过低会导致小片段分辨率不足，浓度过高则会拖慢电泳速度
2. 凝胶制备不均匀：制胶时确保琼脂糖完全溶解并充分混匀后再倒胶
3. 电泳电压过高：过高电压会导致凝胶发热，影响条带分辨率，建议电压控制在5-8V/cm
4. 上样量不当：严格按照5μl上样量使用，过多会导致条带拖尾

建议使用新鲜制备的凝胶，并定期更换电泳缓冲液，以获得最佳的条带分离效果