🩸 从人血到鸟血·1小时免酚氯仿：YALEPIC® 血液基因组DNA提取，基因组+线粒体+病毒DNA一步回收
雅礼生物 YALEPIC · 国家高新技术企业 · 硅胶膜离心柱法 · 货号 YC22004 · ¥300/50T
血液基因组DNA提取试剂盒是指利用硅胶膜离心柱纯化技术，从0.1~1ml新鲜或冷冻抗凝全血、血浆、血清等样本中快速分离高纯度基因组DNA（gDNA）、线粒体DNA（mtDNA）及病毒DNA的专用试剂组合。YALEPIC® YC22004 采用专用硅胶膜吸附技术，全程无苯酚/氯仿，1小时内完成提取（手动操作＜20分钟），同时兼容禽类、鸟类、两栖类有核红细胞等特殊样本，是临床分子诊断、遗传筛查、法医DNA分型、兽医病原检测及基础科研的优选方案。
🔬 血样DNA提取的四大痛点
酚氯仿毒性大
传统酚氯仿抽提法需接触有毒有机溶剂，长期操作损伤呼吸道和神经系统，废液处理成本高，实验室安全隐患突出。
流程冗长耗时
传统方法裂解→酚抽→氯仿抽→异丙醇沉淀→乙醇洗涤，全程3~5小时，操作步骤多、转移次数多，DNA损耗大。
血红蛋白残留
血液中丰富的血红蛋白和血红素是强PCR抑制剂，去除不彻底会直接导致扩增失败、Ct值漂移或假阴性结果。
有核红细胞难提
禽类、鸟类、两栖类血液含成熟有核红细胞，常规人血试剂盒裂解不完全，DNA产率极低，需专用裂解体系适配。
⚙️ 硅胶膜离心柱法：四步完成提取
YALEPIC® 血液基因组DNA小量提取试剂盒基于硅胶膜可逆吸附原理：在高离液盐条件下，DNA选择性结合于硅胶膜表面，蛋白质、脂类、色素等杂质穿膜去除；经两次洗涤后，低盐洗脱液将纯净DNA从膜上释放。全程无需酚氯仿，操作仅四步：
裂解消化
血液样本+RCL Buffer+蛋白酶K，56℃孵育10分钟，彻底裂解细胞膜、消化蛋白质，释放基因组DNA。
结合吸附
加入YR Buffer（含离液盐），转移至Pure Columns YM硅胶膜柱，离心使DNA选择性吸附于膜上。
洗涤去杂
Wash Buffer GA和GB依次洗涤，去除血红蛋白、盐离子、脂质等PCR抑制物，空离心干燥膜1分钟。
洗脱收集
加YGE Buffer（50-200μl）于膜中央，室温孵育1-5分钟后离心，收集高纯度基因组DNA溶液。
💡 技术亮点：专用硅胶膜对核酸的吸附力远超普通滤膜，洗脱回收率>85%；裂解体系优化了离液盐浓度和pH，同时兼容人源无核红细胞和禽源有核红细胞，一盒通吃人血+禽血+两栖类血液。
✅ 六大核心优势
1小时全流程·手动＜20分钟
裂解10min+结合2min+洗涤4min+洗脱5min，全程不足1小时，手动操作时间＜20分钟，日处理量可达50+样本。
全程无苯酚/氯仿
摒弃传统有机溶剂抽提，无毒无害，废液可直接排入下水道，无需专用通风橱和危废处理，实验室安全等级大幅提升。
兼容有核红细胞
独创裂解体系可高效裂解禽类、鸟类、两栖类成熟有核红细胞，5~20μl禽血即可获得高质量DNA，填补市场空白。
三重DNA一步回收
同一流程同时富集基因组DNA、线粒体DNA和病毒DNA，一份血样即可满足遗传分析、线粒体病研究和病原检测多重需求。
高纯度·高得率
OD260/280稳定在1.7~1.9，200μl人全血可提取3~6μg DNA，无血红蛋白残留，直接上PCR/qPCR/NGS无需额外纯化。
室温保存·免冷链
10~30℃室温保存，常温运输，保质期内无需-20℃储存，实验室备货便捷，野外采样现场提取也成为可能。
🎯 应用场景全景：从临床诊断到禽类研究
血液是临床和科研中最易获取的体液样本之一，从中提取的基因组DNA广泛应用于以下六大方向。YALEPIC® YC22004 凭借广谱样本兼容性和高纯度产出，可在同一平台上覆盖多领域需求：
临床分子诊断
从EDTA抗凝全血提取DNA，用于SNP基因分型、HLA配型、药物代谢酶多态性检测（如CYP2C19、CYP2D6）、遗传病筛查（如地中海贫血、苯丙酮尿症基因检测）。高纯度DNA确保qPCR扩增效率稳定，Ct值重复性好。
→ 适配：PCR / qPCR / 多重PCR / ARMS-PCR
病原核酸检测
血液中游离的病毒DNA（如HBV、EBV、CMV、B19）可被同步富集。提取后直接用于病毒载量定量、耐药突变检测和脓毒症病原体NGS检测。一步回收gDNA+病毒DNA，无需额外购买病毒DNA提取试剂盒。
→ 适配：qPCR / 数字PCR / 宏基因组NGS
肿瘤液体活检
从外周血中提取白细胞基因组DNA作为胚系对照，同时富集ctDNA进行体细胞突变分析。高纯度DNA保障靶向测序文库构建质量，低起始量样本（100μl）亦可获得有效DNA产出。
→ 适配：靶向面板测序 / 全外显子测序
法医DNA分型
从血痕、血凝块、陈旧血样中提取DNA，用于STR分型、亲子鉴定、个体识别。试剂盒兼容EDTA/肝素/枸橼酸钠多种抗凝剂，冻存血样经缓慢解冻后仍可获得完整大片段DNA，满足法医STR扩增的片段完整性要求。
→ 适配：STR复合扩增 / 毛细管电泳
禽类/兽医研究
禽类、鸟类、爬行类、两栖类血液含成熟有核红细胞，常规人血试剂盒裂解不完全。YALEPIC® 专用裂解体系5~20μl禽血即可高效提取，适用于家禽品种鉴定、禽病原检测（如禽流感）、保护遗传学研究。
→ 适配：PCR / qPCR / 微卫星标记 / SSR
基础科研与建库
提取的基因组DNA可直接用于限制性酶切、Southern印迹杂交、基因文库构建、甲基化分析（MS-PCR/Bisulfite测序）、线粒体DNA全测序等。DNA片段完整（>30kb），满足酶切和建库对大片段的需求。
→ 适配：酶切 / Southern blot / NGS建库 / 亚硫酸盐测序
📋 典型样本类型与推荐用量
📦 产品规格与组分明细
💾 保存条件：10~30℃室温保存，常温运输。
⏳ 保质期：未开封室温保存1年以上，蛋白酶K长期储存建议分装置-20℃。
💰 目录价：¥300.00 / 50T，雅礼生物YALEPIC品牌，国家高新技术企业。
⚖️ 柱式法 vs 酚氯仿法 vs 磁珠法：血液DNA提取方案对比
❓ 常见问题 FAQ
Q1：血液基因组DNA提取需要多长时间？
整个流程通常在30~40分钟内完成。具体步骤：样本裂解10分钟、结合2分钟、两次洗涤各1分钟、干燥膜1分钟、洗脱1分钟。若洗脱前将缓冲液60℃预温并孵育5分钟，得率可提升10%~15%，全程约45分钟。
Q2：提取的DNA能直接用于qPCR或测序吗？
完全可以。提取的基因组DNA纯度OD260/280通常在1.7~1.9之间，无血红素和蛋白残留，不含有机溶剂，可直接用于常规PCR、qPCR、多重PCR、NGS文库构建、甲基化分析等。对数字PCR建议洗脱后用TE缓冲液稀释后再加样，避免微量盐离子影响微滴生成。
Q3：DNA得率低怎么办？
常见原因及对策：①白细胞数量少（免疫缺陷样本），可增加采血量或离心富集白细胞层；②冻存血未充分混匀，取出后置冰上缓慢解冻并颠倒混匀；③蛋白酶K裂解不充分，确认试剂未过期、56℃孵育延长至20分钟；④洗脱液未垂直滴于膜中央，室温孵育2~5分钟后再离心。若仍无改善，建议荧光定量法（如Qubit）检测以排除单链DNA降解。
Q4：能用肝素抗凝全血提取吗？
可以使用肝素抗凝全血，但肝素对PCR有潜在抑制作用。建议裂解前用PBS洗涤细胞1~2次，或增加一次Wash Buffer洗涤以去除残余肝素。提取后应检测OD260/230比值确保＞1.8。若仍出现扩增抑制，可将DNA用3M醋酸钠/乙醇沉淀重溶，或选用肝素耐受性更强的聚合酶。
Q5：柱式法和磁珠法血液DNA提取试剂盒怎么选？
柱式法无需磁力架，只需普通台式离心机，单次处理样本量灵活，洗脱体积小（可低至50μl），DNA浓度更高，更适合样本量有限的实验。柱式法成本仅为磁珠法的1/3~1/2。大部分科研和临床常规检测柱式法已完全满足需求，只有全自动大批量（>96样本/天）提取时磁珠法才有通量优势。
Q6：提取的DNA如何保存？反复冻融有影响吗？
纯化后基因组DNA建议分装后-20℃保存，可稳定保存2年以上；长期保存可置于-80℃。避免反复冻融——每次冻融会造成大片段DNA机械剪切断裂，导致平均长度降低。每管DNA溶液冻融次数应控制在3次以内。
Q7：能同时提取病毒DNA吗？和专门的病毒DNA试剂盒有什么区别？
YC22004的裂解体系可同时裂解白细胞、红细胞（有核/无核）以及血液中游离的病毒颗粒，因此一份血样可同时回收基因组DNA+线粒体DNA+病毒DNA。与专门的病毒DNA提取试剂盒相比，柱式法的洗涤步骤同样高效去除血红素等PCR抑制剂，提取的病毒DNA可直接用于qPCR检测。区别在于病毒DNA的丰度更低，若要专门做病毒载量检测且样本量<50μl时，建议使用专用病毒试剂盒。
Q8：禽类血液用量为什么只有5~20μl？与人血200μl差距这么大？
禽类、鸟类和两栖类血液含有成熟有核红细胞，每个红细胞中有一个细胞核，DNA含量远高于人血（无核红细胞）。5~20μl禽血所含的白细胞+有核红细胞DNA总量已接近甚至超过200μl人血，因此只需微量血样即可获得充足DNA，这是有核红细胞样本的天然优势。
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📚 参考文献与延伸阅读
- Boom R, Sol CJ, Salimans MM, et al. Rapid and simple method for purification of nucleic acids. Journal of Clinical Microbiology, 1990, 28(3): 495–503.
- QIAGEN. QIAamp DNA Blood Mini Kit Handbook. 2023. 硅胶膜离心柱法从血液中提取基因组DNA的标准参考方案。
- Miller SA, Dykes DD, Polesky HF. A simple salting out procedure for extracting DNA from human nucleated cells. Nucleic Acids Research, 1988, 16(3): 1215.
- Butler JM. Forensic DNA Typing: Biology, Technology, and Genetics of STR Markers. 2nd ed. Elsevier Academic Press, 2005. 血液DNA在法医STR分型中的应用。
- Ghatak S, Muthukumaran RB, Nachimuthu SK. A simple method of genomic DNA extraction from human samples for PCR-RFLP analysis. Journal of Biomolecular Techniques, 2013, 24(4): 224–231. 血液DNA提取方法学比较。
- Mulero JJ, Chang CW, Lagacé RE, et al. Development and validation of the AmpFlSTR MiniFiler PCR Amplification Kit. Journal of Forensic Sciences, 2008, 53(4): 838–852. 血液/血痕样本在法医STR扩增中的应用验证。
