即用型2×预混液 | 延伸快至1 sec/kb| 高效扩增复杂模板|20kb 基因组
YALEPIC® Novalign Flash HiFi MasterMix包含了通过基因改造技术实现快速扩增的热启动高保真DNA聚合酶、dNTPs和优化的PCR扩增反应缓冲液,扩增时只需加入模板、引物和水。该产品具有PCR抑制物耐受性高、模板兼容性强、延伸速度快、扩增特异性高、扩增效率高等特点,3kb以内片段延伸速度可达1 sec/kb,10kb以内片段可达5 sec/kb延伸速度。该产品具有 5’→3′ DNA聚合酶活性和 3’→5′ 核酸外切酶活性,扩增产物为平末端,其保真度是普通Taq酶的108倍,可高效扩增15 kb以内的基因组片段及20 kb以内的质粒DNA。
| 特性 | 参数说明 |
|---|---|
| 超高保真度 | 保真度约为普通Taq DNA聚合酶的 108倍,具有3‘→5’核酸外切酶校正活性,可精准校对错配碱基,适用于克隆、突变分析等高精度下游应用 |
| 超快速扩增 | ≤3 kb片段延伸速度仅 1 sec/kb;≤10 kb片段延伸速度 5 sec/kb,显著缩短PCR实验周期 |
| 长片段能力 | 可高效扩增 15 kb以内基因组片段及 20 kb以内质粒DNA,满足大多数长片段PCR需求 |
| 复杂模板兼容性 | 对高GC含量模板、含抑制剂粗样品等复杂模板表现出优异的扩增性能,模板兼容性广泛 |
| 扩增特异性强 | 采用热启动技术,有效抑制非特异性扩增和引物二聚体形成,确保扩增产物单一、产量高 |
| 即用型便捷配方 | 2×预混液形式,包含所有必需组分,简化操作、降低污染风险,适配高通量实验流程 |
本产品广泛适用于各类PCR扩增反应,包括但不限于:高保真PCR、基因克隆、定点突变、NGS文库扩增、菌落PCR、基因分型及SNP检测等。
-20℃ 避光保存,< 0℃ 运输。使用前请充分解冻并轻柔混匀。避免反复冻融,建议首次使用后按需分装保存。
Q1:该产品的保真度有多高?与普通Taq酶相比有何优势?
A:YALEPIC® Novalign Flash HiFi MasterMix的保真度约为普通Taq DNA聚合酶的 108倍。其DNA聚合酶具有3‘→5’核酸外切酶(校正)活性,可在扩增过程中实时识别并切除错配的核苷酸,确保极高的复制准确性。这一特点使其特别适合基因克隆、定点突变分析及NGS文库构建等对序列保真度要求严苛的应用–。
Q2:该产品的延伸速度是多少?最短可缩短至多少时间?
A:本产品的延伸速度根据目标片段长度分为两档:≤3 kb的片段:延伸速度可达 1 sec/kb;≤10 kb的片段:延伸速度 5 sec/kb。相较于常规高保真聚合酶15–30 sec/kb的延伸速率,本产品可显著缩短PCR反应周期,实现“快速PCR”。对于难度较高的长片段扩增,建议根据实际情况适当延长延伸时间以保证产量。
Q3:该产品是否含有染料?Dye版和非Dye版有什么区别?
A:本产品提供两种版本:
| 货号 | 版本 | 说明 |
|---|---|---|
| YEM51006-A | 非Dye版(标准型) | 不含示踪染料,适用于对荧光信号检测有要求的应用(如qPCR、NGS文库扩增) |
| YEM51006-B | Dye版(含染料) | 含有电泳示踪染料,PCR反应结束后可直接进行琼脂糖凝胶电泳,简化操作、节省时间 |
Q4:该产品能否扩增高GC含量模板?是否需要额外添加增强剂?
A:可以。本产品配方经过优化,具有较强的复杂模板兼容性,可直接扩增一定范围内的高GC含量片段。对于GC含量极高的困难模板,建议可尝试以下优化策略:1)适当提高变性温度或延长变性时间;2)使用梯度退火温度测试最佳条件。如需进一步优化,建议联系雅礼生物技术支持团队获取专业指导。
Q5:该产品扩增产物是平末端还是粘末端?如何进行TA克隆?
A:YALEPIC® Novalign Flash HiFi MasterMix的扩增产物为 平末端(Blunt End) ,因为其DNA聚合酶具有3’→5’校正活性,不会在产物3’端额外添加A碱基。推荐直接使用平末端克隆载体进行连接,效率最高。若必须进行TA克隆,可先纯化PCR产物以彻底去除高保真聚合酶,然后使用Taq DNA聚合酶在纯化后的平末端产物3’端添加A尾,再进行TA连接。
Q6:PCR反应出现非特异性条带或弥散条带(smear),如何解决?
A:可能原因及解决方案:
| 可能原因 | 解决方案 |
|---|---|
| 退火温度偏低 | 提高退火温度,建议进行梯度退火温度优化(通常50–65°C范围测试) |
| 引物设计不佳 | 重新设计引物,确保引物3’端特异性,避免引物自身互补配对 |
| 引物浓度过高 | 降低引物浓度(建议0.2–0.5 μM终浓度) |
| 模板量不当 | 减少模板用量,基因组DNA通常50–200 ng为宜 |
| 循环数过多 | 适当减少循环数,通常25–35个循环即可满足大多数扩增需求 |
若弥散条带问题持续存在,建议使用新鲜提取的高质量模板DNA,并检查所有试剂的储存状态。
Q7:MasterMix中出现沉淀是否影响使用?
A:不影响。MasterMix在低温储存或反复冻融后可能出现少量沉淀,这是正常现象。使用前请将MasterMix取出置于室温解冻,每隔10–15分钟轻柔颠倒混匀数次,直至沉淀完全溶解,然后瞬时离心收集即可正常使用。性能测试表明,多次冻融循环(最多30次)对MasterMix的PCR扩增性能无显著影响。如需长期保存,建议首次使用后分装冻存,减少反复冻融–。
Q8:如何进行PCR反应的污染防控?
建议遵循以下规范以最大程度降低PCR污染风险:
分区操作:在实验室内划定专门的PCR体系配制区域,与模板处理和PCR产物分析区域严格分开;
专用器具:配制区配备专用移液器、一次性带滤芯吸头及PCR管,避免交叉使用;
规范操作:打开PCR试剂管前短暂离心,使液体沉降至管底,减少对手套和移液器的污染;
模板管控:在自己的实验台上稀释DNA模板,仅将所需稀释液带入配制区;
产物隔离:PCR完成后,切勿将含有扩增产物的PCR管带入配制区,在指定区域进行后续电泳检测等操作;
设置对照:每次PCR反应均应设置无模板阴性对照(NTC),以监测是否存在DNA污染。