能否与GelRed、SYBR Green等荧光染料兼容？

兼容。YALEPIC® 15K DNA Marker可与GelRed、SYBR Green、Goldview等常见核酸荧光染料配合使用。但需注意：不同染料对DNA的染色效率不同，可能影响条带亮度表现，建议首次使用某类染料时进行预实验优化曝光参数。若为EB染色，建议使用终浓度0.5µg/ml的EB溶液染色15-20分钟后观察。

产品中是否有可见的沉淀物？如何处理？

正常产品应为澄清透明溶液。如发现沉淀，可能原因包括：①运输过程中温度波动导致SDS沉淀；②长期保存后出现微量沉淀。处理方法：室温放置片刻或37℃温和加热5-10分钟，上下轻柔颠倒混匀后即可正常使用。不建议剧烈震荡或沸水浴加热，以免DNA变性。

YALEPIC® 15K DNA Marker可以用在哪些具体实验场景中？

典型应用场景包括：①PCR产物的片段大小验证——电泳后与Marker比对确认扩增片段是否符合预期；②质粒DNA酶切鉴定——通过酶切片段大小确认重组质粒构建是否正确；③基因组DNA酶切图谱分析——Southern blot前的片段大小筛选；④DNA片段回收前的质量评估——确定目的条带位置便于切胶回收；⑤连接产物、酶切产物的片段大小鉴定与浓度半定量分析。

YALEPIC 1Kb DNA Marker适用于哪些类型的电泳？上样量是多少？

本产品专为琼脂糖凝胶电泳设计，不建议用于聚丙烯酰胺凝胶电泳。作为即用型产品，已预混1×Loading Buffer，每次电泳直接取5 μl上样即可。如遇加样孔较宽的情况，可适当增加上样量至10 μl以保证条带亮度。

YALEPIC 1Kb DNA Marker的条带组成和浓度分别是多少？

本Marker由8条双链DNA片段组成，分子量分别为1000 bp、2000 bp、3000 bp、4000 bp、5000 bp、6000 bp、8000 bp、10000 bp。各条带浓度设计为：4000 bp条带100 ng/5 μl（亮带指示），6000 bp条带40 ng/5 μl（略弱），其余6条条带均为50 ng/5 μl。该浓度配置便于同时进行片段大小定位和半定量分析。

我应该选择多少浓度的琼脂糖凝胶来跑1kb DNA Marker？

推荐使用1%琼脂糖凝胶进行电泳，可实现1000 bp至10000 bp范围内各条带的有效分离。如需在低分子量区域获得更高的分辨率，可将凝胶浓度上调至1.5%~2%。凝胶浓度过大会导致大片段条带的迁移受阻，浓度过低则会导致小片段条带分离不充分。

电泳后发现DNA Marker的条带出现弥散或模糊不清，可能是什么原因？

可能原因包括：①电泳缓冲液使用次数过多，离子强度下降导致缓冲能力减弱，建议每次电泳使用新鲜TAE或TBE缓冲液；②电泳电压过高（超过20 V/cm）导致条带扩散和弥散；③上样量不足或过量；④琼脂糖凝胶浓度与目的片段不匹配。请按照说明书推荐的5 μl上样量和1%凝胶浓度操作，并控制电泳电压在适宜范围内。

电泳时Marker的部分条带（特别是小片段条带）变弱或丢失，如何解决？

小片段条带变弱是电泳过程中的常见现象，主要原因是小片段DNA在电泳中迁移速度更快，当DNA条带迁移至凝胶前沿与核酸染料区域时，染料与DNA的结合可能发生解离，导致荧光信号减弱–。建议措施：①使用新鲜配制的电泳缓冲液并保持合适的离子强度；②适当缩短电泳时间或降低电压；③在凝胶中加入终浓度为0.5 μg/ml的EB或等效核酸染料；④选择分辨率更高的凝胶成像系统进行观察。

YALEPIC 1Kb DNA Marker可以在聚丙烯酰胺凝胶中使用吗？

不建议。本产品的条带分子量范围覆盖1000 bp至10000 bp，在琼脂糖凝胶中可获得理想的分离效果，但在非变性聚丙烯酰胺凝胶中，该分子量范围内的DNA片段迁移行为与琼脂糖凝胶存在显著差异，条带分离效果无法保证。如需在PAGE胶中使用DNA分子量标准，建议选择针对PAGE体系优化的专用Marker。

该Marker应该如何保存？有效期是多久？反复冻融会影响使用效果吗？

本产品在2~8℃条件下避光保存可稳定两年；在-20℃冷冻保存有效期可延长至三年。建议按日常用量进行小量分装后冷冻保存，避免整管反复冻融。反复冻融可能造成DNA链断裂或降解，进而影响条带清晰度和浓度准确性。日常使用的工作液可保存于2~8℃，建议在4周内用完。

YALEPIC 1Kb DNA Marker与其他品牌的1kb DNA Ladder相比有什么优势？

本产品以酶切质粒DNA工艺制备，相比传统的PCR产物混合型Marker，条带分子量定位更准确，背景更干净，无非特异性杂带干扰。产品已预混1×Loading Buffer，开盖即用，无需额外稀释或配制，节省实验时间。同时，4000 bp条带以100 ng/5 μl设计为超亮指示带，在电泳图像中辨识度极高，便于快速定位参照位置。在价格方面，雅礼生物以极具竞争力的市场定价，为科研用户提供高性价比的选择。

该Marker是否含有核酸酶？会不会降解我后续实验中的DNA样品？

YALEPIC 1Kb DNA Marker在制备过程中经过严格的核酸酶失活处理，不含残留核酸酶活性。该产品仅作为电泳时的分子量参照，不会对同批次上样的样品DNA造成降解。但为避免交叉污染，建议电泳时使用专用的加样枪头和上样缓冲液，并遵循标准的电泳操作规范。

如果电泳后发现条带出现拖尾或微笑效应，该如何调整？

条带拖尾或微笑效应通常与以下因素有关：①凝胶配制不均匀或未完全凝固即上样；②电泳槽内缓冲液液面未完全淹没凝胶面；③电泳过程中电压不稳定或电流过大；④上样量过载。建议：确保凝胶完全凝固后再移除梳子；电泳缓冲液需完全覆盖凝胶表面1~2 mm；控制恒压电泳在80~120 V范围内；按说明书推荐的上样量（5 μl）上样，避免过载。

YALEPIC 2K DNA Marker适用于哪种凝胶电泳？能否用于聚丙烯酰胺凝胶电泳？

本产品专为琼脂糖凝胶电泳设计，不推荐用于聚丙烯酰胺凝胶电泳。在1%琼脂糖凝胶、电压6-8V/cm的条件下电泳20-40分钟，条带分离效果最佳。聚丙烯酰胺凝胶的分辨率虽高，但DNA Marker在其中的迁移特性与琼脂糖凝胶不同，可能导致片段大小判断不准确。

使用YALEPIC 2K DNA Marker时，上样量是多少？需要额外添加Loading Buffer吗？

本产品为即用型，已预混1×Loading Buffer，每次电泳直接取5µl上样即可，无需额外配制或添加Loading Buffer-1。如果是小型凝胶或孔道较小，可根据实际情况适当调整至2-3µl。

为什么750bp条带比其他条带更亮？会影响我的定量判断吗？

750bp条带是设计为加亮参照条带，其浓度为100ng/5µl，而其他条带浓度为50ng/5µl。这一设计便于在电泳结果中快速定位参照条带，同时可辅助目标DNA片段的半定量分析。如需准确定量，建议将目标条带亮度与750bp加亮条带进行对比参照。

YALEPIC 2K DNA Marker的有效期是多久？如何正确保存？

本产品在2~8℃条件下可保存24个月，在-20℃条件下可保存36个月。建议收货后根据使用频率选择保存方式——如频繁使用，可存放于4℃；如长期未用，建议分装后于-20℃长期保存，避免反复冻融导致DNA降解。

YALEPIC 2K DNA Marker可以用于DNA定量吗？

可以用于半定量分析。本产品中750bp加亮条带浓度为100ng/5µl，其余条带均为50ng/5µl。通过比对各泳道目标条带与Marker中对应大小条带的亮度，可对目标DNA浓度进行估算。如需精确定量，建议使用荧光定量法（如Qubit或qPCR）。

资源支持

雅礼生物FAQ中心汇集了用户在使用核酸提取、PCR纯化、磁珠法DNA/RNA提取等产品的常见问题。您可以按产品类型浏览，或直接搜索关键词快速定位所需答案。

共 1132 条FAQ，分 57 页显示，当前第 5 页

产品FAQ

以下FAQ来源于各产品详情页，涵盖样本保存、核酸提取、PCR/qPCR、转染、血清、耗材等品类。点击产品名称可跳转至产品详情页。

YALEPIC® 15K DNA 分子量标准

能否与GelRed、SYBR Green等荧光染料兼容？: 兼容。YALEPIC^® 15K DNA Marker可与GelRed、SYBR Green、Goldview等常见核酸荧光染料配合使用。但需注意：不同染料对DNA的染色效率不同，可能影响条带亮度表现，建议首次使用某类染料时进行预实验优化曝光参数。若为EB染色，建议使用终浓度0.5µg/ml的EB溶液染色15-20分钟后观察。

产品中是否有可见的沉淀物？如何处理？: 正常产品应为澄清透明溶液。如发现沉淀，可能原因包括：①运输过程中温度波动导致SDS沉淀；②长期保存后出现微量沉淀。处理方法：室温放置片刻或37℃温和加热5-10分钟，上下轻柔颠倒混匀后即可正常使用。不建议剧烈震荡或沸水浴加热，以免DNA变性。

YALEPIC® 15K DNA Marker可以用在哪些具体实验场景中？: 典型应用场景包括：①PCR产物的片段大小验证——电泳后与Marker比对确认扩增片段是否符合预期；②质粒DNA酶切鉴定——通过酶切片段大小确认重组质粒构建是否正确；③基因组DNA酶切图谱分析——Southern blot前的片段大小筛选；④DNA片段回收前的质量评估——确定目的条带位置便于切胶回收；⑤连接产物、酶切产物的片段大小鉴定与浓度半定量分析。

YALEPIC® 1Kb DNA 分子量标准

YALEPIC 1Kb DNA Marker适用于哪些类型的电泳？上样量是多少？: 本产品专为琼脂糖凝胶电泳设计，不建议用于聚丙烯酰胺凝胶电泳。作为即用型产品，已预混1×Loading Buffer，每次电泳直接取5 μl上样即可。如遇加样孔较宽的情况，可适当增加上样量至10 μl以保证条带亮度。

YALEPIC 1Kb DNA Marker的条带组成和浓度分别是多少？: 本Marker由8条双链DNA片段组成，分子量分别为1000 bp、2000 bp、3000 bp、4000 bp、5000 bp、6000 bp、8000 bp、10000 bp。各条带浓度设计为：4000 bp条带100 ng/5 μl（亮带指示），6000 bp条带40 ng/5 μl（略弱），其余6条条带均为50 ng/5 μl。该浓度配置便于同时进行片段大小定位和半定量分析。

我应该选择多少浓度的琼脂糖凝胶来跑1kb DNA Marker？: 推荐使用1%琼脂糖凝胶进行电泳，可实现1000 bp至10000 bp范围内各条带的有效分离。如需在低分子量区域获得更高的分辨率，可将凝胶浓度上调至1.5%~2%。凝胶浓度过大会导致大片段条带的迁移受阻，浓度过低则会导致小片段条带分离不充分。

电泳后发现DNA Marker的条带出现弥散或模糊不清，可能是什么原因？: 可能原因包括：①电泳缓冲液使用次数过多，离子强度下降导致缓冲能力减弱，建议每次电泳使用新鲜TAE或TBE缓冲液；②电泳电压过高（超过20 V/cm）导致条带扩散和弥散；③上样量不足或过量；④琼脂糖凝胶浓度与目的片段不匹配。请按照说明书推荐的5 μl上样量和1%凝胶浓度操作，并控制电泳电压在适宜范围内。

电泳时Marker的部分条带（特别是小片段条带）变弱或丢失，如何解决？: 小片段条带变弱是电泳过程中的常见现象，主要原因是小片段DNA在电泳中迁移速度更快，当DNA条带迁移至凝胶前沿与核酸染料区域时，染料与DNA的结合可能发生解离，导致荧光信号减弱–。建议措施：①使用新鲜配制的电泳缓冲液并保持合适的离子强度；②适当缩短电泳时间或降低电压；③在凝胶中加入终浓度为0.5 μg/ml的EB或等效核酸染料；④选择分辨率更高的凝胶成像系统进行观察。

YALEPIC 1Kb DNA Marker可以在聚丙烯酰胺凝胶中使用吗？: 不建议。本产品的条带分子量范围覆盖1000 bp至10000 bp，在琼脂糖凝胶中可获得理想的分离效果，但在非变性聚丙烯酰胺凝胶中，该分子量范围内的DNA片段迁移行为与琼脂糖凝胶存在显著差异，条带分离效果无法保证。如需在PAGE胶中使用DNA分子量标准，建议选择针对PAGE体系优化的专用Marker。

该Marker应该如何保存？有效期是多久？反复冻融会影响使用效果吗？: 本产品在2~8℃条件下避光保存可稳定两年；在-20℃冷冻保存有效期可延长至三年。建议按日常用量进行小量分装后冷冻保存，避免整管反复冻融。反复冻融可能造成DNA链断裂或降解，进而影响条带清晰度和浓度准确性。日常使用的工作液可保存于2~8℃，建议在4周内用完。

YALEPIC 1Kb DNA Marker与其他品牌的1kb DNA Ladder相比有什么优势？: 本产品以酶切质粒DNA工艺制备，相比传统的PCR产物混合型Marker，条带分子量定位更准确，背景更干净，无非特异性杂带干扰。产品已预混1×Loading Buffer，开盖即用，无需额外稀释或配制，节省实验时间。同时，4000 bp条带以100 ng/5 μl设计为超亮指示带，在电泳图像中辨识度极高，便于快速定位参照位置。在价格方面，雅礼生物以极具竞争力的市场定价，为科研用户提供高性价比的选择。

该Marker是否含有核酸酶？会不会降解我后续实验中的DNA样品？: YALEPIC 1Kb DNA Marker在制备过程中经过严格的核酸酶失活处理，不含残留核酸酶活性。该产品仅作为电泳时的分子量参照，不会对同批次上样的样品DNA造成降解。但为避免交叉污染，建议电泳时使用专用的加样枪头和上样缓冲液，并遵循标准的电泳操作规范。

如果电泳后发现条带出现拖尾或微笑效应，该如何调整？: 条带拖尾或微笑效应通常与以下因素有关：①凝胶配制不均匀或未完全凝固即上样；②电泳槽内缓冲液液面未完全淹没凝胶面；③电泳过程中电压不稳定或电流过大；④上样量过载。建议：确保凝胶完全凝固后再移除梳子；电泳缓冲液需完全覆盖凝胶表面1~2 mm；控制恒压电泳在80~120 V范围内；按说明书推荐的上样量（5 μl）上样，避免过载。

YALEPIC® 2K DNA 分子量标准

YALEPIC 2K DNA Marker适用于哪种凝胶电泳？能否用于聚丙烯酰胺凝胶电泳？: 本产品专为琼脂糖凝胶电泳设计，不推荐用于聚丙烯酰胺凝胶电泳。在1%琼脂糖凝胶、电压6-8V/cm的条件下电泳20-40分钟，条带分离效果最佳。聚丙烯酰胺凝胶的分辨率虽高，但DNA Marker在其中的迁移特性与琼脂糖凝胶不同，可能导致片段大小判断不准确。

使用YALEPIC 2K DNA Marker时，上样量是多少？需要额外添加Loading Buffer吗？: 本产品为即用型，已预混1×Loading Buffer，每次电泳直接取5µl上样即可，无需额外配制或添加Loading Buffer-1。如果是小型凝胶或孔道较小，可根据实际情况适当调整至2-3µl。

为什么750bp条带比其他条带更亮？会影响我的定量判断吗？: 750bp条带是设计为加亮参照条带，其浓度为100ng/5µl，而其他条带浓度为50ng/5µl。这一设计便于在电泳结果中快速定位参照条带，同时可辅助目标DNA片段的半定量分析。如需准确定量，建议将目标条带亮度与750bp加亮条带进行对比参照。

YALEPIC 2K DNA Marker出现条带模糊或拖尾，可能是什么原因？如何解决？

条带模糊或拖尾通常与以下因素有关:

可能原因	解决方案
琼脂糖凝胶浓度不合适	建议使用1%琼脂糖凝胶，浓度过高或过低都会影响分辨率–
凝胶配制不均匀或气泡过多	重新制胶，确保琼脂糖完全溶解且无气泡
电泳电压过高	采用6-8V/cm的中等电压，避免产热过高导致条带弥散–
Marker反复冻融导致降解	分装保存，避免反复冻融
上样量过多	控制上样量为5µl，过多会导致条带扩散或相邻泳道交叉污染

YALEPIC® 2K DNA Marker 和 DL2000 DNA Marker 有什么区别？

YALEPIC® 2K DNA Marker与DL2000 DNA Marker在条带组成上相同，均为100bp/250bp/500bp/750bp/1000bp/2000bp共6条带，产品规格和即用型设计也类似。主要区别在于：

工艺来源： YALEPIC® 2K DNA Marker采用酶切质粒DNA工艺，条带清晰度与批次稳定性高
品牌定位： 雅礼生物提供更具性价比的产品选择
从使用层面看：两者可直接替代使用，实验方案无需调整

YALEPIC 2K DNA Marker的有效期是多久？如何正确保存？: 本产品在2~8℃条件下可保存24个月，在-20℃条件下可保存36个月。建议收货后根据使用频率选择保存方式——如频繁使用，可存放于4℃；如长期未用，建议分装后于-20℃长期保存，避免反复冻融导致DNA降解。

YALEPIC 2K DNA Marker可以用于DNA定量吗？: 可以用于半定量分析。本产品中750bp加亮条带浓度为100ng/5µl，其余条带均为50ng/5µl。通过比对各泳道目标条带与Marker中对应大小条带的亮度，可对目标DNA浓度进行估算。如需精确定量，建议使用荧光定量法（如Qubit或qPCR）。

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